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Influence du Nombre de Repas Infectieux sur la Competence Vectorielle des Mouches Tenerales de Glossina morsitans morsitans (Mall) Infectées par Trypanosoma (Nannomonas) congolense IL 1180

Published online by Cambridge University Press:  19 September 2011

J. M. Kazadi ,
P. Kageruka ,
B. Losson ,
A. Nde Bens  and
L. Mohama
J. M. Kazadi
Affiliation:
Département de Santé Animale, Institut de Médecine Tropicale Prince Léopold, Nationalestraat 155, B-2000 Anvers, Belgique Service de Parasitologie et Pathologies des Maladies Parasitaires, Faculté de Médecine Vétérinaire, B-43 Sart-Tilman, Université de Liège, B-4000 Liège, Belgique
P. Kageruka
Affiliation:
Département de Santé Animale, Institut de Médecine Tropicale Prince Léopold, Nationalestraat 155, B-2000 Anvers, Belgique
B. Losson
Affiliation:
Service de Parasitologie et Pathologies des Maladies Parasitaires, Faculté de Médecine Vétérinaire, B-43 Sart-Tilman, Université de Liège, B-4000 Liège, Belgique
A. Nde Bens
Affiliation:
Département de Santé Animale, Institut de Médecine Tropicale Prince Léopold, Nationalestraat 155, B-2000 Anvers, Belgique
L. Mohama
Affiliation:
Département de Santé Animale, Institut de Médecine Tropicale Prince Léopold, Nationalestraat 155, B-2000 Anvers, Belgique
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Abstract

Teneral tsetse flies, Glossina morsitans morsitans (Mall) aged less than 32 h were divided into two groups and infected initially with Trypanosoma congolense IL 1180. Flies of group A were maintained on healthy rats and those of group B fed exclusively on parasitaemic rats, to ensure regular re-infection. Flies in group A recorded mesoprocyclic, metacyclic and vectorial competence (VC) index values of 0.65 ± 0.09; 0.73 ± 0.10 and 0.47 ± 0.11, respectively. The corresponding values for group B flies were 0.76 ± 0.08; 0.79 ± 0.08 and 0.60 ± 0.10. In group A, the mesoprocyclic and the VC indexes of the females were significantly higher than those of the males. In group B, no such significant differences were registered between the sexes. For both sexes taken together, the mesoprocyclic and the VC indexes of the tsetse flies of group B were more important than those of flies of group A. Males of group B revealed a higher VC index than that of group A males; no significant differences in this index were observed in the females of both groups.

Résumé

Des mouches ténérales (âge < 32 heures) de Glossina morsitans morsitans (Mall), subdivisées en groupes A et B, ont été infectées initialement par Trypanosoma congolense IL 1180. Pendant la période d'entretien, les mouches du groupe A (infectées une fois) ont été nourries sur des rats indemnes et celles du groupe B (soumises aux infections répétitives) ont été gorgées sur des rats parasitémiques. Chez les mouches du groupe A, on a noté des valeurs respectives de 0,65 ± 0,09; 0,73 ± 0,10 et 0,47 ± 0,11 d'indices méso-procyclique, métacyclique et la compétence vectorielle (CV). Chez les mouches du groupe B, on a enregistré des valeurs respectives de 0,76 ± 0,08; 0,79 ± 0,08 et 0,60 ± 0,10 d'indices méso-procyclique, métacyclique et la CV. Chez les mouches du groupe A, l'indice méso-procyclique et la CV des femelles ont été plus importants que ceux des mâles. Chez les mouches du groupe B, aucune différence significative d'indices méso-procyclique ni de CV n'a été observée entre les sexes. Pour tous les sexes confondus, l'indice méso-procyclique et la CV des mouches du groupe B ont été plus importants que ceux des sujets du groupe A. Les mâles du groupe B ont révélé une CV plus importante que ceux du groupe A, tandis qu'aucune différence significative de cet indice n'a été observée chez les femelles des 2 groupes.

Keywords

compétence vectorielle (CV)Glossina morsitans morsitansTrypanosoma congolenserepas infectieuxvectorial competenceGlossina morsitans morsitansTrypanosoma congolenseinfectious meal
Type
Research Articles
Information
International Journal of Tropical Insect Science , Volume 18 , Issue 4 , December 1998 , pp. 377 - 382
Copyright
Copyright © ICIPE 1998

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References

REFERENCES

Diallo, A. (1984) Glossina morsitans submorsitans Newstead 1910 en zone de savane soudano-guinéenne au Mali. IV. Rôle dans la transmission des trypanosomes dans un ranch d'élevage de bovins N&Dama à Madina Diassa. Rev. Elev. Méd. Vét. Pays Trop. 37 (No. spécial), 130–142.Google Scholar
Distelmans, W. and D'Haeseleer, F. (1983) The susceptibility of gamma-irradiated Glossina palpalis palpalis at different ages to infection with Tripanosoma congolense. Ann. Soc. belge Méd. Trop. 63, 21–28.Google Scholar
Elsen, P., Van Hees, J. et De Lil, E. (1993) L'historique et les conditions d'élevage des lignées de glossines (Diptera: Glossinidae) maintenues à l'Institut de médecine tropicale Prince-Léopold d'Anvers, J. Afr. Zool. 107, 439–149.Google Scholar
Geigy, R. and Kauffmann, M. (1973) Sleeping sickness survey in the Serengeti area (Tanzania) 1971: Examination of large mammals for trypanosomes. Acta Trop. 30, 12–23.Google ScholarPubMed
Harley, J. M. B. (1971) The influence of the age of the fly at the time of the infecting feed on infection of Glossina fuscipes with Trypanosoma rhodesiense. Ann. Trop. Med. Parasitol. 65, 191–196.CrossRefGoogle ScholarPubMed
Herbert, W. J. and Lumsden, W. H. R. (1976) Trypanosoma brucei: A «matching» method for estimating the host parasitaemia. Exp. Parasitol. 40, 427–431.CrossRefGoogle Scholar
Jordan, A. M. (1976) Tsetse flies as vectors of trypanosomiasis. Vet. Parasitol. 2, 143–152.CrossRefGoogle Scholar
Kazadi, J. M., Elsen, P., Jochems, M., Van Hees, J., Van den Abbeele, J. et Kageruka, P. (1994) Amélioration de la technique de dissection du tractus digestif et des glandes salivaires des glossines pour la mise en évidence des divers stades de développement des trypanosomes. Rev. Elev. Méd. Vét. Pays Trop. 47, 89–92.CrossRefGoogle Scholar
Kazadi, J. M., Kageruka, P., Martin, O., Losson, B. et Van Hees, J. (1996) Infection expérimentale de Glossina morsitans morsitans (Mall) par Trypanosoma congolense (ZRE/G143/90). Cycle du parasite et compétence vectorielle de la glossine. Vet. Res. 27, 579–587.Google Scholar
Komoin-Oka, C., Truc, P., Bengály, Z., Formenty, P., Duvallet, G., Lauginie, F., Raath, J. P., N'Depo, A. E. et Leforban, Y. (1994) Etude de la prévalence des infections à trypanosomes chez différentes espèces d'animaux sauvages du parc national de la Comoé en Côte d'Ivoire: Résultats préliminaires sur la comparaison de trois méthodes de diagnostic. Rev. Elev. Méd. Vét. Pays Trop. 47, 189–194.CrossRefGoogle Scholar
Ladikpo, E. (1989) Relation vecteur-parasite au cours du cycle de Trypanosoma (Nannomonas) congolense chez Glossina morsitans morsitans: Etude structurale et ultrastructurale. Thèse doct., Spécialité Sciences Biologiques, Parasitologie. 144 pp. Université des Sciences et Techniques de Langue-doc, Montpellier, France.Google Scholar
Le Ray, D. (1989) Vector susceptibility to African trypanosomes. Ann. Soc. belge Méd. Trop. 69 (suppl. 1), 165–171.Google ScholarPubMed
Makumyaviri, A. M. (1990) L'importance épidémiologique de l'hôte expérimental et du réservoir animal de Trypanosoma brucei gambiense. Rev. Méd. Vét. 141, 873–875.Google Scholar
Maudlin, I. (1991) Transmission of African trypanosomiasis: Interactions among tsetse immune system, symbionts and parasites, pp. 117–148. In Advances in Disease Vector Research, Vol. 7 (Edited by Harris, K. F.). Springer-Verlag, New York.CrossRefGoogle Scholar
Mehlitz, D. (1986) Le réservoir animal de la maladie du sommeil à Trypanosoma brucei gambiense. Etudes et synthèses de l'IEMVT no. 18, 156 pp. GTZ/Maisons-Alfort, Eschborn.Google Scholar
Mohamed-Ahmed, M. M., Ahmed, A. I. and Ishag, A. (1989) Trypanosome infection rate of Glossina tnorsitans siibmorsitans in Bahr El Arab, South Darfur Province, Sudan. Trop. Anim. Hlth. Prod. 21, 239–244.CrossRefGoogle Scholar
Moloo, S. K. (1980) Interacting factors in the epidemiology of trypanosomiasis in an endemic/ enzootic region of Uganda and its contiguous area of Kenya. Insect. Sci. Applic. 1, 117–121.Google Scholar
Moloo, S. K. and Gooding, R. H. (1995) A comparison of Glossina morsitans centralis originating from Tanzania and Zambia, with respect to vectorial competence for pathogenic Trypanosoma species, genetic variation and inter-colony fertility. Med. Vet. Entomol. 9, 365–371.CrossRefGoogle ScholarPubMed
Moloo, S. K., Sabwa, C. L. and Kabata, J. M. (1992) Vector competence of Glossina pallidipes and G. morsitans centralis for Trypanosoma vivax, T. congolense and T. b. brucei. Acta Trop. 51, 271–280.CrossRefGoogle Scholar
Moloo, S. K., Zweygarth, E. and Sabwa, C. L. (1995) A comparison of susceptibility to stocks of Trypanosoma simiae of Glossina pallidipes originating from allopatie populations in Kenya. Med. Vet. Entomol. 9, 224–228.CrossRefGoogle ScholarPubMed
Roberts, C. J. and Gray, A. R. (1972) A comparison of Glossina morsitans submorsitans Newst. and G. tachinoides West, collected and maintained under similar conditions, as vectors of Trypanosoma (Nannomonas) congolense, T. (N.) simiae and T. (Duttonella) vivax. Ann. Trop. Med. Parasitol. 66, 41–53.CrossRefGoogle Scholar
Sokål, R. R. and Rohlf, F. J. (1981) Biometry. The Principles and Practice of Statistics in Biological Research (second edition) 859 pp. W.H. Freeman and Company (Eds) New York.Google Scholar
Wijers, D. J. B. (1958) Factors that may influence the infection rate of Glossina palpalis with Trypanosoma gambiense. 1. The age of the fly at the time of the infected feed. Ann. Trop. Med. Parasitol. 52, 385–390.CrossRefGoogle Scholar
Willet, K. C. (1966) ‘Development of peritrophic membrane in Glossina (tsetse flies) and its relation to infection with trypanosomes. Exp. Parasitol. 18, 290–295.CrossRefGoogle Scholar
Woo, P. T. K. (1969) The haematocrit centrifuge for the detection of trypanosomes in blood. Can. J. Zool. 47, 921–923.CrossRefGoogle ScholarPubMed