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ESTIMATING ADULT COCCINELLID POPULATIONS IN WHEAT FIELDS BY REMOVAL, SWEEPNET, AND VISUAL COUNT SAMPLING1

Published online by Cambridge University Press:  31 May 2012

N.C. Elliott ,
R.W. Kieckhefer  and
W.C. Kauffman
N.C. Elliott
Affiliation:
USDA, ARS, NPA, Northern Grain Insects Research Laboratory, Rural Route #3, Brookings, South Dakota, USA 57006
R.W. Kieckhefer
Affiliation:
USDA, ARS, NPA, Northern Grain Insects Research Laboratory, Rural Route #3, Brookings, South Dakota, USA 57006
W.C. Kauffman
Affiliation:
USDA, ARS, NPA, Northern Grain Insects Research Laboratory, Rural Route #3, Brookings, South Dakota, USA 57006
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Abstract

Removal sampling, sweepnet sampling, and visual count sampling conducted while walking at constant velocity through a field were used to sample populations of adults of five coccinellid species in plots established in spring wheat fields, Triticum aestivum L. Estimates of absolute population density obtained from two 20-min removal samples taken from each of six 5- by 5-m sub-plots per plot proved reliable and were used to convert estimates obtained from sweepnet sampling (180 sweeps per plot) and visual counts (36 min per plot walking at 10 m/min) into absolute estimates of population density. Population density estimates obtained by removal sampling were quite precise except for species with low capture efficiencies and low population densities.

Crop plant growth stage influenced the numbers of beetles caught in sweepnet samples and was incorporated in regression models for converting sweepnet catch to absolute density. Values of R2 of regressions ranged from 0.51 to 0.90, depending on species. Visual counts were influenced by temperature and aphid density, and these variables were incorporated in regression models. Values of R2 for regressions relating visual counts to population densities ranged from 0.63 to 0.94, depending on species.

Résumé

L’échantillonnage d’enlèvement, de filet de balayage et de comptage visuel, faits en marchant d’une vélocité constante à travers d’un champ, ont été utilisés pour échantillonner les populations d’adultes de cinq espèces de coccinelles aux lotissements établis dans les champs de blé de printemps, Triticum aestivum L. Les évaluations de la densité absolue des populations obtenues à partir de deux échantillons d’enlèvement de 20 min, pris dans chacun de six sous-lotissements de 5 m par 5 m par lotissement ont prouvé digne de confiance et ont été utilisées pour convertir les évaluations obtenues à partir d’échantillonnage de filet de balayage (180 balayages par lotissement) et de comptage visuel (36 min par lotissement, en marchant à 10 m/min) en évaluations absolues de la densité de la population. Les évaluations de la densité de la population obtenues par l’échantillonnage par enlèvement ont été assez précises, sauf dans le cas des espèces ayant une efficacité de prise et une densité de population basses.

L’étape de croissance de la plante a eu une influence sur le nombre de coccinelles pris aux échantillons de balayage et a été incorporée aux modèles de régression pour convertir les valeurs de prises par le filet de balayage en densité absolue. Les valeurs de R2 des régressions ont varié de 0,51 à 0,90, selon l’espèce. Les comptages visuels ont été influés par la température et la densité des pucerons, et ces facteurs variables ont été incorporés aux modèles de régression. Les valeurs de R2 dans les cas de régressions reliant les comptages visuels aux densités de populations ont varié de 0,63 à 0,94, selon l’espèce.

Type
Articles
Information
The Canadian Entomologist , Volume 123 , Issue 1 , February 1991 , pp. 13 - 22
Copyright
Copyright © Entomological Society of Canada 1991

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References

Elliott, N.C., and Kieckhefer, R.W.. 1990. Dynamics of aphidophagous coccinellid assemblages in small grain fields in Eastern South Dakota. Environ. Ent. In press.Google Scholar
Frazer, B.D., and Raworth, D.A.. 1985. Sampling for adult coccinellids and their numerical response to strawberry aphids (Coleoptera: Coccinellidae: Homoptera: Aphididae). Can. Ent. 117: 153–161.CrossRefGoogle Scholar
Hodek, I. 1973. Biology of Coccinellidae. Acadamia Press, Prague. 260 pp.CrossRefGoogle Scholar
Iperti, G., Lapchin, L., Ferran, A., Rabasse, J.M., and Lyon, J.P.. 1988. Sequential sampling of adult Coccinella septempunctata L. in wheat fields. Can. Ent. 120: 773–778.CrossRefGoogle Scholar
Lapchin, L., Ferran, A., Iperti, G., Rabasse, J.M., and Lyon, J.P.. 1987. Coccinellids (Coleoptera: Coccinellidae) and syrphids (Diptera: Syrphidae) as predators of aphids in cereal crops: A comparison of sampling methods. Can. Ent. 119: 815–822.CrossRefGoogle Scholar
Neter, J., and Wasserman, D.. 1974. Applied Linear Statistical Analysis. Irwin Press, Homewood, IL. 842 pp.Google Scholar
Ruesink, W.G., and Haynes, D.L.. 1973. Sweepnet sampling for the cereal leaf beetle, Oulema melanopus. Environ. Ent. 2: 161–172.CrossRefGoogle Scholar
Seber, G.A.F., and Le Cren, E.D.. 1967. Estimating population parameters from catches large relative to the population. J. Animal Ecol. 36: 631–643.CrossRefGoogle Scholar
SAS Institute. 1985. User's Guide: Statistics. SAS Institute, Cary, NC.Google Scholar
Zadoks, J.C., Chang, T.T., and Konzak, C.F.. 1974. A decimal code for the growth stages of cereals. Weed Res. 14: 415–421.CrossRefGoogle Scholar
Zippin, C. 1956. An evaluation of the removal method of estimating animal populations. Biometrics 12: 163–189.CrossRefGoogle Scholar